实验原理：利用水遇热蒸发为水蒸汽的原理，可用加热烘干法来测定植物组织中的含水量。植物组织含水量的表示方法，常以鲜重或干重 % 表示，有时也以相对含水量 % （或称饱和含水量 % ）表示。后者更能表明它的生理意义。
（二）仪器设备：天平（感量1/1000g）；烘箱；干燥器；剪刀；搪瓷盘；塑料袋；纸袋；吸水纸等。
⒈鲜重测定迅速剪取植物材料，装入已知重量的容器（或塑料袋）中，带入室内，用分析天平称取鲜重（FW）。
⒉干重测定提前把烘箱打开，温度升至100~105℃。把称过鲜重的植物材料装入纸袋中，放入烘箱内，100~105℃杀青10min，然后把烘箱的温度降到70~80℃左右，烘至恒重。取出纸袋和材料，放入干燥器中冷却至室温，称干重（DW）。
⒊饱和鲜重测定将称过鲜重的植物材料浸入水中，数小时后取出，用吸水纸吸干表面水分，立即称重；再次将材料放入水中浸泡一段时间后，再次取出，吸干表面水分，称鲜重，直到两次称重的结果基本相等，最后的结果即为饱和鲜重（SFW）。若事先已知达到水分饱和所用的时间，则可一次取得饱和鲜重的测量定值。
实验原理：将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）。
（二）仪器设备：1.带塞青霉素小瓶12个；2.带有橡皮管的注射针头；3.镊子；4.打孔器5.培养皿。
（一）取干燥洁净的青霉素瓶6个为甲组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L蔗糖溶液约4ml（约为青霉素瓶的2／3处），另取6个干燥洁净的青霉素瓶为乙组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L蔗糖溶液1ml 和微量甲烯蓝粉末着色，上述各瓶加标签注明浓度。
（二）取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片，放至培养皿中，混合均匀。用镊子分别夹入5～8个小圆片到盛有不同浓度的甲烯蓝蔗糖溶液的青霉素瓶中（乙组）。盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。放置约30～60min，为加速水分平衡，应经常摇动小瓶。
（三）经一定时间后，用注射针头吸取乙组各瓶蓝色糖液少许，将针头插入对应浓度甲组青霉素瓶溶液中部，小心地放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向。（每次测定均要用待测浓度的甲烯蓝蔗糖溶液清洗几次注射针头）。如此方法检查各瓶中液流的升降动向。若液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水）；表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势，若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度。
式中：ψw＝植物组织的水势（单位：Mpa）；ψπ＝溶液的渗透势； C＝等渗浓度（mol/L）；R＝气体常数（0.008314 MPa·L /mol/K）；T＝绝对温度；i＝解离系数（蔗糖＝1，CaCl2＝2.60）。
实验原理：植物细胞是一个渗透系统，若将植物细胞放在各种不同浓度的蔗糖溶液中时，由于细胞液的浓度与外界溶液的浓度（或水势）的差异。两者便会发生水分的交换。当细胞液的浓度高于外溶液的浓度（或者说ψs cellψs sol即ψw cell>
ψw sol）时，细胞液中的水分则往外渗透，严重时则引起质壁分离；当细胞液的浓度与外界溶液的浓度相等时，（或者说ψs cell= ψs sol即ψw cell=ψw sol）。细胞内外水分交换处于动态平衡。此时细胞既不紧张也不引起质壁分离，这时外溶液的浓度即为等渗浓度（即细胞内外ψs或ψw相等的浓度）。本实验是以细胞的初始质壁分离（即一视野中有半数细胞产生初始质壁分离）确定为等渗浓度。根据公式，即可计算出外溶液的ψs，即ψs= – iCRT
实验材料与设备：大红花、洋葱、显微镜、载玻片、盖玻片、镊子、刀片、移液管（10ml）2支、培养皿、蔗糖溶液（1mol/L）
实验步骤：1．按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液（母液）分别配成0.1、0.2、0.3、0.5、0.6 mol/L蔗糖溶液各10ml。置于培养皿中，摇匀加盖。
2．撕取带有色素的植物组织（如花瓣、洋葱鳞片等）表皮，分别投入各种浓度的蔗糖液中，（每浓度约放5片），使其完全浸入。
3．20分钟之后依次取出表皮放在载玻片上，滴上同样浓度的溶液1滴，盖上盖玻片，在显微镜下观察细胞产生质壁分离的情况，确定等渗浓度C。
实验原理：离子间的现象的本质是复杂的，它可能反映不同离子对原生质亲水胶粒的稳定性，原生质膜的透性，以及对各种酶活性调节等方面的相互制约作用，从而维持机体的正常生理状态。
实验步骤：1、实验前3~4天选择饱满的小麦种子100粒浸种，在室温下萌发，待根长1cm时可做材料。
3、小烧杯用涂石蜡的纱布盖上。挑选大小相等及根系发育一致的小麦幼苗10株，小心种植在纱布盖的孔里，使根系接触到溶液，然后放到光照培养箱中进行培养，随时补加蒸馏水以保持杯内溶液的水平，7天后观察结果。可看出在单盐溶液中，小麦幼苗生长受阻，特别是它们的根部出现畸形。调查幼苗生长情况（每株鲜重/mg、每株根数/个、每株根的总长度/cm）
实验原理：植物根对不同离子吸收量是不同的，即使是同一种盐类，对其阳离子与阴离子的吸收量也不相同。本实验即利用植物对不同盐类的阴阳离子吸收量的不同，从而改变溶液的PH值来确定这一吸收特性，该实验也使我们了解什么是生理酸性盐、生理碱性盐和生理中性盐。
仪器设备：小麦（洋葱）、PH计、广口瓶、试剂瓶、量筒、烧杯、洗瓶、吸水纸、移液管
实验开始时吸取0.01mg/L浓度的（NH4）2SO4和NaNO3各150ml分别置于两个200ml的广口瓶中，另一个广口瓶中放蒸馏水150ml，然后用PH计（或精密PH试纸）测定以上溶液或蒸馏水的原始PH。
取3株根系发育完善的、大小相似的小麦，分别放于上述3个广口瓶中，在温室下培养3—7天后用PH计测溶液的PH，实验结果按下表记录。
实验原理：光合作用是绿色植物吸收太阳光的能量。同化CO2和H2O为机物质，并释放出O2过程，其中光、CO2、叶绿素是光合作用的必要条件，由于一般植物的光合作用能产生淀粉，故以淀粉能否生成即知光合作用是否进行，可借助于淀粉与I—KI产生蓝色反应检查出来。实验材料与设备：天竺葵、洋紫苏、洒金榕、玻璃钟罩、烧杯、1%NaHCO3溶液、饱和KOH溶液、95%乙醇、酒精灯、表面皿、滴管、锡薄或黑纸片、I2-KI溶液的配制：2gKI溶于5ml 水中，再加1gI2，溶解后加水595ml。
实验步骤：在早上太阳末出来之。
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